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Stau in der Zelle: Wie werden Proteine bestimmten Transportern zugeordnet?

01.04.2019 17:06

Stau in der Zelle: Wie werden Proteine bestimmten Transportern zugeordnet?

Spezielle Transporter sorgen dafür, dass Proteine an die Stellen gebracht werden, an denen sie in der Zelle gebraucht werden. Mit der Kombination innovativer Untersuchungstechniken ist es Biochemikern der Universität Heidelberg gelungen, zwei dieser sogenannten Transportvesikel – die COPI- und COPII-Vesikel – erstmals umfassend zu analysieren.

Stau in der Zelle: Wie werden Proteine bestimmten Transportern zugeordnet?
Heidelberger Forscher bestimmen erstmals umfassend die Zusammensetzung von Transportvesikeln

Ein grundlegender zellulärer Mechanismus sorgt dafür, dass Proteine an die Stellen transportiert werden, an denen sie in den Zellen gebraucht werden. Für den Transport sind sogenannte Vesikel verantwortlich. Ihre Zusammensetzung zu bestimmen, war bislang schwierig, nicht zuletzt aufgrund ihrer kurzen Lebensdauer. Mit der Kombination innovativer Untersuchungstechniken ist es Biochemikern der Universität Heidelberg gelungen, zwei dieser Transportmittel – die COPI- und COPII-Vesikel – erstmals umfassend zu analysieren. Ihre Forschungsergebnisse wurden in der Zeitschrift „Cell Reports“ veröffentlicht.

Etwa ein Drittel aller Proteine, die in unseren Zellen hergestellt werden, beginnen ihr Leben im endoplasmatischen Retikulum, das allgemein als Proteinfabrik dient. Die meisten von ihnen werden jedoch an anderen zellulären Orten benötigt und müssen dorthin transportiert werden. Um einen „Stau“ zu vermeiden, haben Zellen Transportvesikel entwickelt, die wie der öffentliche Nahverkehr funktionieren: Die Passagiere – die Proteinfracht – müssen das passende Ticket vorweisen, um in den richtigen Bus – eine bestimmte Art von Vesikel – zu steigen und an den richtigen Zielort zu gelangen.

Seit Jahrzehnten ist bekannt, dass kleine Vesikel, die sich an der Oberfläche von Organellen bilden, spezifische Proteine verpacken und zu anderen Bereichen der Zelle oder zur Zelloberfläche transportieren. „Mutationen in Genen, die an diesem vesikulären Transport beteiligt sind, führen oft zu Krankheiten. Daher ist es entscheidend zu verstehen, welche Proteine von welchen Vesikeln transportiert werden. Leider haben Transportvesikel eine kurze Lebensdauer und sind schwierig zu reinigen, sind also schwer zu analysieren“, erläutert Prof. Dr. Felix Wieland, der die Forschungsarbeiten am Biochemie-Zentrum der Universität Heidelberg (BZH) geleitet hat.

Um die Zusammensetzung der COPI- und COPII-Vesikel erstmals genauer untersuchen zu können, kombinierten die Wissenschaftler zwei Ansätze. Ein Vesikel-Rekonstitutionsverfahren machte es möglich, große Mengen von Vesikeln zu produzieren und zu reinigen. Die Forscher verwendeten außerdem in Zellkulturen eine stabile Isotopenmarkierung mit Aminosäuren. Dieses Verfahren – kurz SILAC – erlaubt es, verschiedene Proteinmengen mithilfe der Massenspektrometrie präzise zu bestimmen.

„Da wir in der Lage waren, bestimmte Arten von Vesikeln zu generieren und deren eigenen Proteingehalt zu analysieren, konnten wir einen Katalog der Proteinladung für COPI- und COPII-Vesikel definieren. Eine wichtige Erkenntnis ist, dass die Subtypen von COPII-Vesikeln auf den Transport bestimmter Arten von Proteinen spezialisiert zu sein scheinen“, betont Dr. Frank Adolf, der Erstautor der Studie. Die Wissenschaftler hoffen nun, mit diesem Ansatz besser zu verstehen, wie Mutationen im Zusammenhang mit dem vesikulären Transport zu Krankheiten führen.

Als Mitglied des Exzellenzclusters CellNetworks der Ruperto Carola beschäftigt sich Prof. Wieland am Biochemie-Zentrum der Universität Heidelberg mit den Mechanismen des vesikulären Transports und der Protein-Lipid-Interaktionen.

Kontakt:
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Wissenschaftliche Ansprechpartner:

Prof. Dr. Felix Wieland
Biochemie-Zentrum der Universität Heidelberg (BZH)
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felix.wieland@bzh.uni-heidelberg.de

Originalpublikation:

F. Adolf, M. Rhiel, B. Hessling, Q. Gao, A. Hellwig, J. Béthune, and F.T. Wieland: Resource Proteomic Profiling of Mammalian COPII and COPI Vesicles. Cell Reports 26, 250–265 (2 January 2019), https://doi.org/10.1016/j.celrep.2018.12.041